Забор материала для пцр алгоритм

Содержание
  1. Правила забора проб клинического материала для ПЦР-тестирования на COVID–19
  2. Рекомендации по взятию клинического материала на респираторные инфекции, его хранению и транспортированию методом ПЦР.
  3. Забор материала для пцр алгоритм
  4. Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции
  5. Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования
  6. Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из урогенитального тракта у женщин
  7. Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции
  8. Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования
  9. Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала для исследования на энтеробиоз
  10. Инструкция по получению и обработке ректальных мазков
  11. Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований
  12. Инструкция по получению и обработке образцов секрета предстательной железы
  13. Порядок забора секрета предстательной железы для исследований методом ПЦР
  14. Порядок забора секрета предстательной железы для микробиологических исследований
  15. Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из носа
  16. Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований
  17. Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из ротоглотки
  18. Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований
  19. Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала с конъюнктивы
  20. Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований
  21. Инструкция по получению и обработке образцов буккального (щечного) эпителия
  22. Инструкция по получению и обработке образцов ресниц
  23. Порядок сбора ресниц для микроскопического исследования на наличие клещей рода Demodex
  24. Протоколы получения и обработки образцов биологического материала для цитологических исследований
  25. Инструкция по получению и обработке мазков (соскобов) с поверхности шейки матки (наружного маточного зева) и цервикального канала на атипию

Правила забора проб клинического материала для ПЦР-тестирования на COVID–19

Важным условием получения достоверного результата исследования методом ПЦР на COVID–19 является правильный забор, хранение и своевременная доставка клинического материала в лабораторию.

Читайте также:  Безопасная игла для забора крови

Входными воротами для вируса SARS-CoV-2 являются верхние дыхательные пути. После попадания на слизистые носоглотки и ротоглотки вирус начинает размножаться в эпителиальных клетках. Поэтому в конце инкубационного периода и в первые дни клинических проявлений наиболее информативными являются мазки именно из этих областей.

Все процедуры по забору клинического материала выполняет медработник с использованием средств индивидуальной защиты.

  1. Мазки берут двумя сухими стерильными зондами. Для этого используют пластиковые зонды с синтетическим тампоном. Нельзя пользоваться зондом на деревянной основе с хлопковым тампоном, так как его применение может ингибировать реакцию и привести к ложноотрицательным результатам.
  2. Первый зонд вводят поочередно в обе полости носа пациента на глубину 2 см. Затем его направляют слегка вниз и вводят его в нижний носовой ход, прижимают наружную стенку носа и вращательным движением тщательно снимают слущенный эпителий. Вторым зондом берут мазок с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки, не касаясь корня языка.
  3. Мазок из носоглотки и мазок из ротоглотки помещают в одну пробирку с транспортной средой для большей концентрации вируса.
  4. Свободные концы зондов отламывают и герметично закрывают пробирку.

Взятый материал в течение 1-4 часов доставляют в лабораторию с соблюдением холодовой цепи. Допускается хранение биологического материала в течение 24 ч при температуре 2–8°С, более длительно – при температуре не выше минус 20° С. При нарушении сроков хранения и условий транспортировки генетический материал возбудителя может разрушаться, что приведет к ложноотрицательным результатам.

Достоверность результата ПЦР-теста зависит не только от соблюдения правил забора, но и от правильной подготовки к сдаче мазков со стороны пациента:

  • мазок необходимо сдавать натощак или не ранее чем через 3 часа после последнего приёма воды и пищи;
  • за 3 часа до взятия мазка нельзя курить, чистить зубы, использовать спрей-освежитель для ротовой полости или жевательную резинку;
  • не менее чем за 3 часа до взятия мазка нельзя использовать лекарственные средства местного применения (капли, спреи, мази, рассасывающиеся таблетки, леденцы или пастилки).
Читайте также:  Какие есть утеплители для фундамента

Что будет, если есть или пить перед сдачей мазков для ПЦР-теста?

Коронавирус SARS-Cov-2 живет внутри эпителиальных клеток. Для ПЦР-исследования важно получить мазок с достаточным количеством инфицированных клеток. В момент проглатывания еды эпителиальные клетки механически слущиваются пищевым комком с поверхности слизистой оболочки. Если взять мазок сразу после еды, в пробирку может попасть недостаточное количество инфицированных клеток. В этом случае пациент может получить ложноотрицательный результат. То же касается питья. Вода смывает с поверхности миндалин, задней стенки глотки инфицированные клетки.

Можно ли пользоваться лекарственными средствами для носа и горла (капли, спреи, антисептики) перед сдачей мазков?

Перед взятием мазков нельзя использовать лекарственные средства для местного применения (капли, спреи и др). После их применения количество вируса на слизистой снижается и увеличивается вероятность получения ложноотрицательных результатов ПЦР-теста.

Почему нельзя чистить зубы перед сдачей ПЦР-теста?

Применение любых очищающих средств для полости рта снижает количество вируса в получаемом мазке. Зубная паста может содержать антисептические компоненты. Попадание ее остатков в пробирку с мазком может ингибировать реакцию, что приведет к недостоверным результатам.

О.А. Колесникова, биолог лаборатории вирусологических исследований и диагностики ВИЧ/СПИД

Источник

Рекомендации по взятию клинического материала на респираторные инфекции, его хранению и транспортированию методом ПЦР.

Для проведения анализа используется следующий клинический материал:

— мазки из полости носа и ротоглотки;
— мокрота (либо аспираты из носоглотки и трахеи);

Материалы для взятия клинического материала:

Взятие мазков из полости носа

Мазки берут сухими стерильными зондами с ватными тампонами.
Если полость носа заполнена слизью перед процедурой рекомендуется провести высмаркивание. Зонд с ватным тампоном вводят легким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины. Затем зонд слегка опускают книзу, вводят в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, делают вращательное движение и удаляют вдоль наружной стенки носа.
После забора материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в стерильную одноразовую пробирку с 500 мкл транспортной среды для хранения и транспортировки респираторных мазков. Конец зонда отламывают или отрезают, с расчетом, чтобы он позволил плотно закрыть крышку пробирки. Пробирку с раствором и рабочей частью зонда закрывают.

Взятие мазков из ротоглотки

Мазки из ротоглотки берут сухими стерильными зондами с ватными тампонами вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки после предварительного полоскания полости рта водой.
После забора материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в стерильную одноразовую пробирку с 500 мкл транспортной среды для хранения и транспортировки респираторных мазков. Конец зонда отламывают или отрезают, с расчетом, чтобы он позволил плотно закрыть крышку пробирки. Пробирку с раствором и рабочей частью зонда закрывают.

ВНИМАНИЕ! Рекомендуется совмещать мазки из полости носа и ротоглотки в одной пробирке. Для этого рабочие концы зондов после взятия мазков у пациента помещаются в одну пробирку с 500 мкл транспортной среды для хранения и транспортировки респираторных мазков и исследуются как один образец.

Мокрота или аспират из носоглотки или трахеи

Мокроту собирают в стерильные одноразовые контейнеры, после предварительного полоскания полости рта водой. Аспираты из носоглотки и трахеи получают традиционным способом и помещают в стерильные одноразовые контейнеры.

Хранение клинических образцов до проведения анализа

Допускается хранение взятых образцов до проведения исследования в течение 1 сут при температуре от 2 до 8 °С или 1 нед – при температуре не выше минус 16 °С.

Условия транспортирования: при температуре +4+8 °С.

Исследование клинического материала на наличие ДНК возбудителей ИППП и других инфекций органов репродукции методом ПЦР

ВЗЯТИЕ, ТРАНСПОРТИРОВАНИЕ И ХРАНЕНИЕ ИССЛЕДУЕМОГО МАТЕРИАЛА

Для проведения анализа, как правило, используются следующие виды клинического материала:

  • У женщин: соскобное отделяемое слизистых оболочек цервикального канала, влагалища, уретры; моча.
  • У мужчин: соскобное отделяемое слизистой оболочки уретры, моча, секрет предстательной железы.
  • У детей: моча, отделяемое конъюнктивы глаз.

Взятие клинического материала должно производиться в пробирки с транспортной средой, рекомендованной ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
Полученные образцы (кроме образцов мочи) можно транспортировать и хранить в следующих режимах:

при комнатной температуре – в течение 48 часов;
при температуре от 2 до 8 °С – в течение двух недель;
при температуре не выше минус 20 °С – в течение месяца;
при температуре не выше минус 68 °С – длительно.

Полученные образцы, помещенные в транспортную среду с муколитиком (ТСМ), можно транспортировать и хранить:

при комнатной температуре (от 18 до 25 °С) до 28 суток;
при температуре от 2 до 8 °С до 3 месяцев;
при температуре не выше минус 20 °С – длительно.

Допускается однократное замораживание-оттаивание клинических образцов.
Полученные образцы мочи можно транспортировать и хранить:

при комнатной температуре – в течение 6 часов;
при температуре от 2 до 8 °С – в течение суток;

Доставка клинических образцов осуществляется в специальном контейнере с охлаждающими элементами.

Для проведения исследования на наличие ДНК определенного микроорганизма анализируются следующие виды клинического материала:

— для выявления ДНК Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma genitalium, Trichomonas vaginalis, Ureaplasma spp.,U.parvum / U.urealyticum, Mycoplasma hominis–соскобное отделяемое слизистых оболочек урогенитального тракта, образцы мочи, секрет предстательной железы человека.

— для выявления ДНК Chlamydia trachomatisи Neisseria gonorrhoeae возможно также исследовать отделяемое конъюнктивы глаз, соскобное отделяемое слизистых оболочек прямой кишки, ротоглотки.

для выявления ДНК HSVI и II типов, Treponema pallidum– соскобное отделяемое слизистых оболочек урогенитального тракта, прямой кишки, ротовой полости, отделяемое везикул (пузырьковых высыпаний) и эрозивно-язвенных поражений кожи и слизистых оболочек.

для выявления ДНК HSVI и II типов можно также исследовать цельную кровь и ликвор, отделяемое конъюнктивы глаз.

для выявления ДНК CMV – соскобное отделяемое слизистых оболочек урогенитального тракта, моча, слюна и цельная кровь.

для выявления ДНКCandida albicans– соскобное отделяемое слизистых оболочек урогенитального тракта, ротовой полости; моча.

для выявления ДНКGardnerella vaginalis– соскобное отделяемое слизистой оболочки влагалища.

Источник

Забор материала для пцр алгоритм

Порядок забора биоматериала для микроскопического исследования

  • Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
  • Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
  • Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
  • Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
  • При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
  • Ввести зонд (тип А) в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).

  • Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
  • Вынуть зонд из уретры.
  • Биоматериал, взятый с помощью зонда, нанести на предметное стекло. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
  • Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
  • Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции

  • Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
  • Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала. Для исследований методом ПЦР — флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф»). Для посевов выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
  • Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
  • Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
  • При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
  • Ввести зонд (тип А) в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).
  • Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
  • Вынуть зонд из уретры.
  • Перенести зонд во флакон/микропробирку со средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе/микропробирке!
  • Закрыть флакон/микропробирку.
  • Поместить флакон/микропробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования

  • Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
  • Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).

  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
  • Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
  • При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
  • Достать зонд (Рисунок 26).

  • Ввести зонд в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).
  • Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
  • Вынуть зонд из уретры.
  • Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из урогенитального тракта у женщин

Порядок забора биоматериала для микроскопического исследования

  • Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
  • Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
  • Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
  • Забор биоматериала производится с трех участков: наружное отверстие цервикального канала (C), задний свод влагалища (V), наружное отверстие мочеиспускательного канала (U). Подписать предметное стекло в направлении слева направо водостойким маркером (Рисунок 28).

  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
  • Ввести урогенитальный зонд 1 (тип А) в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд (Рисунок 29).

  • Нанести мазок на предметное стекло слева. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
  • Провести урогенитальным зондом 2 (тип А) по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
  • Нанести мазок в центре предметного стекла. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
  • Извлечь гинекологическое зеркало.
  • Ввести урогенитальный зонд 3 (тип А) в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
  • Нанести мазок на предметное стекло справа. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
  • Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
  • Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции

  • Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
  • Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
  • Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала. Для исследований методом ПЦР — флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф»). Для посевов выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
  • Ввести урогенитальный зонд 1 (тип А) в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд (Рисунок 29).
  • Вынуть зонд и перенести его во флакон/микропробирку со средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе/микропробирке!
  • Провести урогенитальным зондом 2 (тип А) по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
  • Перенести зонд в тот же флакон/микропробирку со средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
  • Извлечь гинекологическое зеркало.
  • Ввести урогенитальный зонд 3 (тип А) в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
  • Перенести зонд в тот же флакон/микропробирку со средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
  • Закрыть флакон/микропробирку.
  • Поместить флакон/микропробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования

  • Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
  • Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
  • Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  • Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
  • Достать зонд (Рисунок 26).
  • Провести зондом по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
  • Вынуть зонд.
  • Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Извлечь гинекологическое зеркало.
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала для исследования на энтеробиоз

Порядок забора биоматериала

  • Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
  • Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
  • Собрать соскоб с перианальных складок вокруг ануса методом «отпечатка» в нескольких местах липкой лентой длиной 5 см.
  • После получения отпечатка аккуратно наклеить липкую ленту на предметное стекло клейкой стороной вниз.
  • Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.
  • Хранение и транспортировка контейнера производятся при комнатной температуре.

Инструкция по получению и обработке ректальных мазков

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

  • Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
  • Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
  • Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
  • Ввести зонд в задний проход на глубину 4–5 см.
  • Аккуратно вращать зонд вокруг оси, собирая материал.
  • Осторожно извлечь зонд.
  • Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
  • Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

  • Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25), достать зонд (Рисунок 26).
  • Ввести зонд в задний проход на глубину 4–5 см.
  • Аккуратно вращать зонд вокруг оси, собирая материал.
  • Осторожно извлечь зонд.
  • Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов секрета предстательной железы

Забор материала для исследования выполняется врачом-урологом после проведения массажа простаты.

Порядок забора секрета предстательной железы для исследований методом ПЦР

  • Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
  • После проведения массажа простаты осуществить забор материала из уретры с помощью урогенитального зонда.
  • Погрузить рабочую часть зонда во флакон со средой.
  • Вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона, удалить зонд и закрыть флакон.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
  • Хранить и транспортировать флакон с образцом при температуре +2…+8 °С.

Порядок забора секрета предстательной железы для микробиологических исследований

  • Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
  • После проведения массажа простаты осуществить забор материала из уретры с помощью урогенитального зонда.
  • Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку.
  • Хранить и транспортировать транспортную пробирку при температуре +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из носа

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

  • Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
  • Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Ввести зонд последовательно в правую и левую ноздрю и вращательными движениями собрать материал с крыльев носа и верхнего угла носового отверстия (Рисунок 31).

  • При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
  • Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
  • Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

  • Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
  • Достать зонд (Рисунок 26).
  • Ввести зонд последовательно в правую и левую ноздрю и вращательными движениями собрать материал с крыльев носа и верхнего угла носового отверстия (Рисунок 31).
  • При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
  • Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из ротоглотки

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

  • Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
  • Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Взять зонд в правую руку, в левую взять шпатель.
  • Прижать язык пациента к нижней части ротовой полости шпателем.
  • Собрать материал, поочередно обрабатывая зондом правую миндалину, правую небную дужку, левую миндалину, левую небную дужку, язычок, на уровне язычка коснуться зондом задней стенки глотки (Рисунок 32).

  • При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
  • Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
  • Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

Для исследования на дифтерию забор биоматериала осуществляется из зева и носа!
Не допускается собирать материал из ротоглотки при воспаленном надгортаннике, так как проведение процедуры может привести к серьезной респираторной обструкции.
При взятии пробы нельзя касаться тампоном слизистых щек, языка, десен, губ.

  • Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
  • Достать зонд (Рисунок 26).
  • Взять зонд в правую руку, в левую взять шпатель.
  • Прижать язык пациента к нижней части ротовой полости шпателем.
  • Собрать материал, поочередно обрабатывая тампоном правую миндалину, правую небную дужку, левую миндалину, левую небную дужку, язычок, на уровне язычка коснуться зондом задней стенки глотки (Рисунок 32).
  • При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
  • Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала с конъюнктивы

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

  • Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
  • Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Большим пальцем левой руки опустить нижнее веко одного из глаз, одновременно приподнимая указательным пальцем верхнее веко того же глаза, максимально обнажая конъюнктиву.
  • Стерильным зондом, находящимся в правой руке, сделать 2–3 круговых движения по конъюнктиве глаза, не касаясь им ресниц (Рисунок 33).

  • Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
  • Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
    Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
  • Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

  • Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
  • Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
  • Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
  • Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
  • Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25), достать зонд (Рисунок 26).
  • Большим пальцем левой руки опустить нижнее веко одного из глаз, одновременно приподнимая указательным пальцем верхнее веко того же глаза, максимально обнажая конъюнктиву.
  • Стерильным зондом, находящимся в правой руке сделать 2–3 круговых движения по конъюнктиве глаза, не касаясь им ресниц (Рисунок 33).
  • Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
  • Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов буккального (щечного) эпителия

Порядок забора биоматериала

  • Подготовить флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») и два стерильных зонда (тип А) (или любой другой аналогичный образец).
  • Промаркировать флакон (наклеить на него штрих-код).
  • Вскрыть стерильную упаковку первого зонда.
  • Попросить пациента запрокинуть голову, открыть рот и постараться не двигаться во время процедуры забора.
  • Ввести зонд в полость рта в щечно-десневой карман (в этом месте скапливается большое количество слущенного эпителия), слегка прижать его рукой снаружи, зажав между щекой и десной (Рисунок 34).

  • Возвратно-поступательными движениями, вращая зонд пол-оборота вправо, пол-оборота влево провести несколько раз (не менее 5), собирая клетки внутреннего эпителия.
  • Вывести зонд из полости рта и перенести его во флакон.
  • Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  • Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд.
  • Вскрыть стерильную упаковку второго зонда и повторить процедуру забора для другой щеки, собирая материал в тот же флакон.
  • Плотно закрыть флакон.
  • Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов ресниц

Забор материала для исследования ресниц производится только лечащим врачом-офтальмологом!

Порядок сбора ресниц для микроскопического исследования на наличие клещей рода Demodex

  • Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
  • Капнуть на предметное стекло 1 каплю глицерина.
  • Погрузить в каплю 6 ресниц из предполагаемого очага воспаления.
  • Накрыть препарат покровным стеклом.
  • Поместить предметное стекло в пластиковый контейнер с вентиляцией.
  • Контейнер хранить и транспортировать при температуре +2…+8 °С.
  • Промаркировать микропробирку типа «Эппендорф» (наклеить на нее штрих-код).
  • Накапать в микропробирку 1–2 капли глицерина.
  • Поместить в глицерин на дно микропробирки 6 ресниц из предполагаемого очага воспаления.
  • Плотно закрыть крышку микропробирки.
  • Микропробирку хранить и транспортировать при температуре +2…+8 °С.

Протоколы получения и обработки образцов биологического материала для цитологических исследований

Инструкция по получению и обработке мазков (соскобов) с поверхности шейки матки (наружного маточного зева) и цервикального канала на атипию

Порядок забора биоматериала

Не допускается взятие мазков после обработки шейки матки раствором уксусной кислоты или Люголя, так как полученный материал будет содержать только лизированные клетки и станет непригоден для исследования!

  • Материал из шейки матки должен брать врач-гинеколог специальными цитощетками.
  • Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
  • Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
  • Промаркировать два предметных стекла (наклеить на них штрих-коды).
  • Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  • Шейку матки обнажить в зеркалах, никаких манипуляций с ней не проводить: ничем не смазывать, слизь не удалять.
  • Щетку бережно ввести в наружный зев шейки матки, осторожно направляя центральную часть щетки по оси цервикального канала.
  • Наконечник щетки повернуть трижды на 360° по часовой стрелке и дважды на 360° против часовой стрелки, достигая тем самым взятия достаточного количества клеток с эктоцервикса и зоны трансформации.
  • Щетку вывести сразу! Однократно провести одной стороной щетки по поверхности первого предметного стекла, второй стороной щетки — однократно по поверхности второго предметного стекла. Материал наносится на стекла мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
  • Извлечь гинекологическое зеркало.
  • Высушить предметные стекла на воздухе при комнатной температуре. Ничем не фиксировать!
  • Стекла поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.

Источник

Оцените статью
Профи Огород